摘要：本实验室前期通过质谱分析筛选到宿主因子三方基序蛋白37(TRIM37),推测其可能与猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)的复制相关。为探究TRIM37对PRRSV复制的影响,本研究将不同剂量的PRRSV HN07-1株(MOI分别为0.01、0.1、1)分别感染猪肺泡巨噬细胞(PAM)和MARC-145细胞后不同时间(6 h、12 h、24 h、36 h和48 h),采用荧光定量PCR(qPCR)检测细胞中内源TRIM37的转录水平,结果显示PRRSV能够刺激这两种细胞内源TRIM37的转录,并且PRRSV以MOI 1及感染后24 h细胞中TRIM37的转录水平最高,感染后36 h和48 h细胞中TRIM37的转录水平较感染后24 h有所下降但仍显著高于对照组(P<0.05)。从MARC-145细胞中经PCR扩增TRIM37基因并克隆至pCAGGS-HA中构建真核表达质粒pCAGGS-HA-TRIM37,经双酶切及测序鉴定正确后转染MARC-145细胞,24 h后以MOI 1将HN07-1株感染细胞,感染后不同时间分别采用qPCR、western blot、病毒滴度(TCID50)测定和间接免疫荧光试验(IFA)检测PRRSV的复制情况。结果显示,与转染空载体pCAGGS-HA的对照细胞相比,过表达TRIM37后细胞中PRRSV ORF7的转录水平、N蛋白的表达水平(感染后48 h和72 h)及病毒滴度(感染后36 h与48 h)均显著(P<0.05)或者极显著(P<0.01)下降。针对TRIM37基因设计3对特异性的TRIM37 siRNA-1/2/3,转染MARC-145细胞后,利用qPCR检测TRIM37 siRNA的干扰效率,结果显示,TRIM37 siRNA-2能够有效降低TRIM37的转录水平。将TRIM37 siRNA-2转染MARC-145细胞后再以MOI 1 HN07-1株感染,感染后不同时间分别采用qPCR、western blot和病毒滴度(TCID50)测定检测PRRSV的复制情况。结果显示,与转染NC siRNA的对照细胞相比,干扰TRIM37表达的细胞中PRRSV ORF7的转录水平、N蛋白的表达水平及病毒滴度均显著(P<0.05)或极显著(P<0.01)升高。进一步将不同剂量的pCAGGS-HA-TRIM37与报告质粒pRL-TK-Luc和pIFN-β-Luc共转染HEK293T细胞;同时将不同剂量的pCAGGS-HA-TRIM37与报告质粒pRL-TK-Luc和pISRE-Luc共转染HEK293T细胞,18 h后加入poly(I:C)处理上述各组细胞,6 h后利用双荧光素酶试剂盒检测各组细胞中IFN-β和ISRE启动子的活性。将pCAGGS-HA-TRIM37转染HEK293T细胞,18 h后加入poly(I:C)处理细胞,6 h后采用qPCR检测细胞中相关干扰素刺激基因(ISG)(ISG15、CXCL10、MX1和OAS1)相对转录水平。双荧光素酶试验结果显示,与转染空载体的对照细胞相比,过表达TRIM37显著上调细胞中poly(I:C)激活的IFN-β和ISRE启动子的活性(P<0.05),且这种上调作用具有剂量依赖性。qPCR结果显示,与转染空载体的对照细胞相比,过表达TRIM37显著上调细胞中poly(I:C)激活的ISG15、CXCL10、MX1和OAS1 mRNA的转录水平(P<0.05)。本研究首次表明TRIM37能够通过促进细胞中相应干扰素的表达抑制PRRSV复制,该结果丰富了病毒感染过程中PRRSV-宿主相互作用的网络和机制,深化了对PRRSV致病机制的认知。

摘要：为研究猪圆环病毒3型（PCV3）Cap基因在大肠杆菌中的表达产物是否具有免疫原性,根据GenBank中发表的PCV3基因组序列,设计1对特异性引物,PCR扩增PCV3 Cap基因,克隆到pMD18-T载体。测序结果表明获得了Cap基因,其大小为543bp。并将Cap亚克隆到原核表达载体pET-28a中,再转化入大肠杆菌Rosetta（DE3）中,获得重组菌株。获得的重组菌37℃、0.6mmol/L IPTG诱导6h,进行SDS-PAGE及Western blot分析。重组菌破碎后从沉淀中获取1条约24 600的新蛋白带,可与小鼠抗His单克隆抗体发生特异性反应。有研究表明PCV3与PCV2不具有免疫交叉保护作用,因此本试验表达的具有良好的抗原性PCV3 Cap蛋白,为PCV3新型亚单位疫苗和ELISA诊断试剂盒的研制奠定了基础。

摘要：为了建立一种快捷、特异、敏感的检测猪圆环病毒3型（PCV3）的SYBR GreenⅠ实时荧光定量PCR方法,根据GenBank公布的PCV3全基因组序列,在rep基因高度同源保守区设计并合成1对特异性引物,从阳性病料DNA中PCR扩增PCV3rep基因。PCR产物克隆入pMD18-T载体中,构建重组质粒（pMD18-PCV3rep）,转化到大肠杆菌DH-5α中。经PCR及测序鉴定后得到阳性重组质粒,作为荧光定量PCR的标准品模板,经过反应条件优化,建立了检测PCV3的SYBR GreenⅠ荧光定量PCR方法。该检测方法线性关系良好,R2=0.998 2;仅PCV3阳性病料出现特异性扩增,而与另外6种病原无交叉反应;该方法检测下限为21.9copies/μL;批间及批内变异系数分别为0.394%-0.935%和0.112%-0.775%,均小于1%。经临床应用证实,该方法具有良好地特异性、敏感性和稳定性,为PCV3的早期检测、定量检测及后期研究提供了技术支持。

摘要：为建立快速检测猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪博卡病毒(PBoV)3/4/5型的双重PCR方法,本研究根据Gen Bank中登录的PEDV ORF1基因序列和PBoV不同基因型VP1序列,设计2对特异性引物,通过对PCR扩增条件的优化,建立了能够同时检测PEDV和PBoV3/4/5型双重PCR方法,特异性检测结果显示该方法对猪细小病毒、猪圆环病毒2型、猪伪狂犬病毒、大肠杆菌、沙门氏菌、猪链球菌核酸扩增均为阴性;敏感性检测结果显示,对PEDV和PBoV3/4/5型重组质粒标准品的最低检出量分别为837拷贝/μL和1 000拷贝/μL;临床样品的检测结果显示,所建立的双重PCR方法可同时有效地检测出PEDV和PBoV3/4/5型混合感染及单独感染。本研究建立的双重PCR方法具有良好的特异性、敏感性、重复性,为快速、高效检测PEDV和PBoV提供了技术帮助。

摘要：为建立同时快速检测猪流行性腹泻病毒(PEDV)和猪圆环病毒3型(PCV3)的二重PCR方法,本研究根据GenBank中登录的PEDV M基因和PCV3 Rep基因高度同源保守序列设计并合成2对特异性引物,分别扩增PEDV M基因与PCV3 Rep基因,经过反应条件优化,建立了检测PEDV与PCV3的二重SYBR GreenⅠ实时荧光定量PCR方法。结果显示:该方法对PEDV和PCV3的检测结果为阳性,而对猪圆环病毒2型、猪传染性胃肠炎病毒和猪轮状病毒等8种常见的病原体均未检测到荧光信号;且具有良好的线性关系,R^2为0.99;应用本方法对PEDV和PCV3的最低检出量分别为37.6拷贝/μL和61.2拷贝/μL;组内和组间变异系数均小于2%。结果表明:本试验建立的PEDV和PCV3二重实时荧光定量PCR方法具有良好的特异性、敏感性、重复性,为快速、高效、定量检测PEDV和PCV3提供了技术帮助。

摘要：为了建立一种快速和高通量检测猪博卡病毒(PBoV)的方法,本研究根据GenBank中登录的PBoV 1/2型NS1基因高度同源保守序列设计并合成一对特异性引物,建立了检测PBoV1/2的SYBR Green Ⅰ荧光定量PCR方法。结果表明,该方法对常见的其它病毒均未检测到荧光信号,而仅对PBoV1/2检测为阳性;其灵敏度为45拷贝/μL,比常规PCR方法高100倍;组内和组间变异系数均小于5%。本实验建立的荧光定量PCR方法具有特异、敏感、快速、定量、重复性好等优点,为PBoV的早期诊断和定量分析PBoV感染程度提供参考。

摘要：为建立一种用于检测猪圆环病毒3型(PCV3)的PCR方法,本研究针对Gen Bank中PCV3全基因序列在其保守区设计一对特异性引物,并优化反应条件,建立了PCV3的PCR检测方法。结果显示,该PCR方法仅对PCV3检测为阳性,而对其它常见病原的DNA模板均无扩增。对PCV 3的最低检出量为61.9拷贝/μL。结果表明该方法具有良好的特异性和敏感性。通过该方法对133份临床样品进行检测,结果显示PCV3阳性率为29%(38/133),表明PCV3在河南地区已有流行。该方法的建立使PCV3的检测更为快速、简便、经济、实用,为PCV3感染的早期诊断提供了有力的技术支持。

摘要：猪圆环病毒3型(PCV3)是一种新的猪圆环病毒,与猪皮炎和肾病综合征、母猪繁殖障碍及心脏和多系统炎症相关。为了建立一种同时快速检测猪圆环病毒2型(PCV2)和PCV3的双重PCR方法,根据GenBank收录的PCV2和PCV3基因序列,分别在PCV2 Cap基因和PCV3 Rep基因高度同源保守区设计并筛选2对特异性引物,经过双重PCR反应条件的优化,建立了同时检测PCV2/3的双重PCR检测方法。本方法可同时扩增出PCV2、PCV3的486,270bp特异性片段,而扩增猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、猪瘟病毒(CSFV)、伪狂犬病病毒(PRV)等病原核酸结果均为阴性;PCV2/3最低检出量分别为139,21.7拷贝/μL。经临床应用表明,本试验建立的双重PCR方法简便、快速,敏感度高,特异性强,为PCV2/3的鉴别诊断和联合检测提供了依据。

摘要：猪博卡病毒(PBo V)是2009年新发现的一种DNA病毒,常于腹泻仔猪体内检测到该病毒。为建立该病毒的检测方法,本研究根据Gen Bank中登录的PBo V 1/2型的高度同源保守序列设计一对特异性引物,经PCR扩增条件优化,建立了PBo V 1/2型的PCR检测方法。特异性试验结果显示,该PCR方法仅从PBo V 1或2型的阳性病料样品中特异性的扩增出751 bp的目的片段,而对猪伪狂犬病毒、圆环病毒、大肠杆菌、沙门氏菌的核酸样品的扩增结果均为阴性。敏感性试验显示,该PCR方法对PBo V 1/2重组质粒标准品的最低检测量为34.8拷贝/μL。对来自河南中牟、开封、兰考、濮阳、洛阳等地猪场发生腹泻疫情的70份猪病料样品,采用该方法进行检测,其中10份样品呈PBo V 1/2型阳性,阳性率为14.29%。该PCR检测方法的建立为PBo V1/2型的诊断和监测提供技术支持。

摘要：根据GenBank中公布的猪伪狂犬病病毒(porcine pseudorabies virus,PRV)US区基因序列(KJ789182),设计2对特异性引物,扩增PRV NY株gE/gI基因两侧序列,克隆至pUC-19载体,构建转移质粒pUC-gE/gILR,同时插入绿色荧光蛋白(EGFP)标记基因,构建转移质粒pUC-gE/gILRE,作为重组同源臂。以PRV NY流行株为亲本株,将其基因组与转移质粒pUC-gE/gILRE共转染ST细胞,通过筛选绿色荧光蚀斑,获得含有荧光蛋白的重组病毒rPRV NY-gE^-/gI^--EGFP^+。再以该毒株基因组与转移质粒pUC-gE/gILR进行同源重组,通过筛选无荧光蚀斑,纯化重组病毒,经PCR扩增、测序,证实获得了去除EGFP基因的重组病毒rPRV NY-gE^-/gI^-。该重组病毒在ST细胞上培养时,与亲本株PRV NY具有相似的生长曲线,但该重组病毒的体外生长动力学比亲本株弱。本研究成功构建了1株针对目前PRV流行株的gE/gI双基因缺失病毒,为我国根除PR提供技术支持。