摘要：UML作为一种通用的可视化建模语言,解决了传统软件开发方法中的诸多问题,以面向对象的思想对软件开发实行改进。文章以P2P文件共享系统为背景,使用UML方法进行系统建模。在需求分析阶段,以用例来捕获用户需求,描述系统功能。在系统设计阶段,获取问题域中的主要概念,如抽象、类和对象等,并识别出这些类以及相互间的关系,用UML类图加以描述,同时为实现用例、类之间的协作,引入了UML的动态建模机制,如状态图、顺序图等。

摘要：目的探讨μ阿片受体(MOR)羧基端^(375)STANT^(379)位点磷酸化对吗啡镇痛效果的影响。方法针对MOR羧基端^(375)STANT^(379)序列设计穿膜多肽,采用标准固相合成方法进行合成,采用高效液相色谱(HPLC)和高分辨质谱法(HRMS-ESI)分别测定合成多肽的纯度和相对分子质量,检测合成无误后用于后续实验。采用CCK-8法检测合成多肽对表达MOR的HEK-293细胞的毒性作用。采用热板法检测各组小鼠末次给药后不同时间点吗啡镇痛反应率,观察合成多肽对吗啡镇痛效果的影响。结果针对^(375)STANT^(379)关键磷酸化区域设计多肽TAT-Q368-T379,HPLC检测多肽纯度大于96%,HRMS-ESI检测多肽相对分子质量2894.4834(预期相对分子质量2894.5625),多肽合成正确,符合后期实验要求。CCK-8法检测结果显示各组细胞存活率差异无显著意义(P>0.05),多肽安全范围广。热板法检测结果显示多肽预处理组小鼠吗啡镇痛时间较吗啡组明显延长(Waldχ^(2)_(组别)=1519.252,Waldχ^(2)_(时间)=756.177,Waldχ^(2)_(组别*时间)=8657.036,P<0.05)。结论MOR羧基端^(375)STANT^(379)磷酸化区域与吗啡镇痛相关,针对这一区域氨基酸序列设计的多肽可作为工具竞争性抑制该位点磷酸化,有效改善吗啡镇痛效果。

摘要：目的探讨基于μ阿片受体(MOR)羧基端^(375)STANT^(379)磷酸化位点的多肽TAT-Q368-T379干预,对μ阿片受体下游信号通路的影响。方法将HA-MOR质粒与pGloSensorTM-22F质粒共转染的HEK-293细胞分为空白组(A组)、DAMGO组(B组)、吗啡组(C组)、0.5×10^(-5)mol/L多肽TAT-Q368-T379与吗啡联用组(D组)、10-5mol/L多肽TAT-Q368-T379与吗啡联用组(E组)、2×10^(-5)mol/L多肽TAT-Q368-T379与吗啡联用组(F组),通过GloSensor cAMP生物传感器测定各组细胞中的cAMP含量。将MOR-C端标记Nanoluc的质粒以及β-arrestin2-N端标记EYFP的质粒共转染完成的HEK-293细胞分为空白组(G组)、DAMGO组(H组)、吗啡组(I组)、10^(-5)mol/L多肽TAT-Q368-T379与吗啡联用组(J组)、3×10^(-5)mol/L Cmpd101与吗啡联用组(K组),通过蛋白质相互作用分析法测定各组细胞MOR激动后对β-arrestin2的募集效应。将HA-MOR质粒转染完成的HEK-293细胞分为空白组(L组)、吗啡组(M组)、10^(-5)mol/L多肽TAT-Q368-T379与吗啡联用组(N组)以及3×10^(-5)mol/L Cmpd101与吗啡联用组(O组),通过细胞免疫荧光染色法检测各组细胞的受体平均荧光强度。结果GloSensor cAMP生物传感器检测结果显示,C~F组细胞EC_(50)值差异有显著性(F=13.12,P<0.05),其中D、E、F组EC_(50)值较C组均显著减小(P<0.05)。蛋白质相互作用分析法分析显示,I~K组细胞E_(max)值差异有显著性(F=185.95,P<0.05),其中J、K组E_(max)值较I组均显著减小(P<0.01)。细胞免疫荧光染色法染色结果显示,L~O组细胞表面受体荧光强度比较差异有显著性(F=17.46,P<0.05),其中与M组比较,N、O组细胞表面受体荧光强度均显著增高(P<0.01)。结论基于MOR羧基端^(375)STANT^(379)磷酸化位点设计的多肽TAT-Q368-T379可有效增强吗啡介导的MOR下游G蛋白信号通路的激活,减少吗啡介导的β-arrestin2招募,从而减少由吗啡介导的MOR的内吞。