摘要：背景:慢性肾功能衰竭患者由于内环境的紊乱及免疫功能的低下,易受体内外致病因素的影响而发生心、肺病变。肾移植后传统非特异性免疫抑制剂的联合应用,成为肺损伤发生的高危因素。目的:随访观察肾移植患者移植前后肺功能检测指标及肺部影像学的动态变化。设计、时间及地点:病例自身对照观察,于2003-02/2006-05在解放军北京空军总医院呼吸科及泌尿外科完成。对象:纳入52例终末期肾病患者,均在解放军北京空军总医院接受肾移植手术。方法:分别于肾移植前、移植后3,6,12个月随访观察52例患者的自身肺功能变化,同期观察其肺部影像学变化。主要观察指标:肾移植患者肾移植前后肺通气功能、弥散功能及肺部影像学变化。结果:①肾移植前,肺功能异常者占79%,其中多以阻塞性通气功能障碍和弥散功能下降为突出表现。②移植后3个月,患者的弥散功能和阻塞性通气功能障碍有部分好转,但肺限制性通气功能障碍比移植前突出。③移植后6,12个月,近一半的患者肺功能趋于稳定在正常范围之内。④移植前肺功能和弥散功能的损害较肺部影像学明显,前者发生率为79%,后者为54%。肾移植后,肺部影像学明显改善,且以肺部间质性改变为主要表现。结论:肾移植能显著改善终末期肾病患者的肺功能,尤其是小气道功能和弥散功能。肾移植前后肺部影像学的异常主要表现为程度不同的肺间质性改变。

摘要：目的：研究细胞学标本间变性淋巴瘤激酶（ ALK）蛋白表达及基因融合检测的规范化流程。方法收集北京市7所三级甲等医院晚期肺腺癌细胞学标本，按照设计的规范化流程检测ALK蛋白表达及基因融合状态。制作福尔马林固定石蜡包埋（ FFPE）细胞学蜡块，应用免疫组化（ IHC）方法鉴别肿瘤细胞的来源与分型；应用Ventana IHC ALK（ D5F3）检测ALK蛋白的表达；应用实时荧光定量PCR（ qRT-PCR）方法检测表皮生长因子受体（ EGFR）基因野生型标本中ALK基因融合，并对无法制作细胞学蜡块的细胞学标本进行ALK基因融合检测；Ventana IHC ALK（ D5F3）检测阳性标本应用荧光原位杂交（FISH）方法验证ALK基因的融合状态。分析Ventana IHC ALK（D5F3）检测阳性并采用克唑替尼治疗患者的疗效。结果229例细胞学标本符合肺腺癌诊断，其中207例标本采用至少1种方法检测并获得ALK蛋白表达和基因融合检测结果，检测率为90．4％（207／229）。203例标本成功制作FFPE细胞学蜡块，应用Ventana IHC ALK（D5F3）检测ALK蛋白表达的成功率为100．0％，阳性率为10．3％（21／203）。98例EGFR基因野生型肺腺癌FFPE细胞学标本采用qRT-PCR方法检测ALK基因融合，96例检测成功（97．96％）。以qRT-PCR方法为标准，Ventana IHC ALK（D5F3）检测ALK蛋白表达的灵敏度为100．0％，特异性为98．7％。2种检测方法一致率为94．7％（ Kappa＝0．967， P＜0．001）。 FISH方法对Ventana IHC ALK（ D5F3）表达阳性的结果进行验证，2例寡肿瘤细胞学标本无法获得明确判读结果。6例Ventana IHC ALK（ D5F3）检测ALK蛋白表达阳性的患者选用克唑替尼治疗，有效5例。2例细胞学蜡块应用4％甲醛固定72 h后，Ventana IHC ALK（ D5F3）染色强度明显减弱；10例患者分别用FFPE细胞学蜡块标本切片和刮取细胞学甩片中细胞提取总RNA，qRT-PCR检测ALK基因融合结果一致。结论所设计的ALK蛋白表达及基因融合检测流程，扩展了细胞学标本的检测类型，提高了检测率。 Ventana IHC ALK（ D5F3）是检测细胞学标本ALK蛋白表达的可靠方法，检测前病理质量控制过程对检测结果的准确性至关重要。细胞学标本无法制作细胞学蜡块时， qRT-PCR是进行ALK基因融合检测的可选方法。

摘要：目的 探讨细胞学标本表皮生长因子受体（EGFR）基因突变检测的规范化流程.方法 收集北京6家医院287例临床怀疑肺癌的细胞学标本,应用设计的规范化检测流程检测细胞学标本中EGFR基因突变状态.选择40例非小细胞肺癌（NSCLC）患者富于肿瘤细胞胸水标本,比较同一标本采用石蜡包埋和细胞学甩片中刮取癌细胞同时检测EGFR突变的一致性,比较直接测序（Seq）法及扩增受阻突变系统（ARMS）方法检测EGFR基因突变状态的差异.对应用吉非替尼治疗的患者分析其基因突变状态与疗效的关系.结果 287例怀疑肺癌的细胞学标本中,发现肿瘤细胞236例（82.2％,236/287）,其中寡肿瘤细胞标本31例（13.1％,31/236）,富于肿瘤细胞学标本205例（86.9％,205/236）.富于肿瘤细胞学标本中,180例（87.8％,180/205）诊断为***法检测富于肿瘤细胞NSCLC标本EGFR基因突变率为27.8％ （50/180）,腺癌标本为28.2％ （50/177）.ARMS方法检测富于肿瘤细胞NSCLC标本EGFR基因突变率为45.6％ （82/180）,腺癌标本为46.3％（82/177）.寡肿瘤细胞标本ARMS方法检测EGFR突变率为38.7％（12/31）,与富于肿瘤细胞标本EGFR突变率差异无统计学意义（P=0.12）.40例富于癌细胞胸水标本中,ARMS检测石蜡包埋细胞学标本和细胞学甩片刮取癌细胞标本的EGFR基因突变率均为37.5％ （15/40）,一致率为100％.吉非替尼治疗ARMS（＋）组和ARMS（-）组患者的无进展生存时间（PFS）分别为12个月和2个月（P ＜0.001）,总生存时间（OS）分别为19个月和7个月（P=0.003）.吉非替尼治疗Seq（＋）组和Seq（-）组患者的PFS分别为12个月和7个月（P =0.227）,OS分别为20个月和15个月（P=0.510）.吉非替尼治疗Seq（＋）ARMS（＋）组和Seq（-）ARMS（＋）组患者的PFS分别为12个月和10个月（P =0.354）,OS分别为20个月和17个月（P=0.334）.结论 细胞学标本EGFR基因突变检测的流程具有可靠性和可行性,病理质控和免疫组化染色在细胞学标本EGFR基因突变检测流程中作用重要,细胞学标本EGFR基因突变检测需采用高灵敏度的检测方法.