摘要：目的:探索一种高效制备人胃蛋白酶原Ⅱ(pepsiongenⅡ,PGⅡ)体外诊断试剂用校准品的方法。方法:以汉逊酵母ATCC26012作为宿主菌,以携带Zeocin及G418双重筛选标记的pRMHP2.1质粒为载体,以遗传密码子优化设计后的PGⅡ序列为目的基因,通过电转化及后续多轮次的传代与稳定,筛选获得高水平分泌表达PGII蛋白的重组菌株26012/PGⅡ。采用Ni柱亲和层析的方法从200L发酵罐大量制备的培养液中纯化出高纯度的重组PGⅡ蛋白,将该蛋白质进行校准定值后配制成6种不同浓度的成套PGⅡ校准品,并对该系列校准品的实时稳定性、加速破坏性及开瓶稳定性展开评价。结果:筛选获得的重组汉逊酵母菌株26012/PGⅡ外源基因整合拷贝数高于40个且整合于染色体的r DNA位置,该菌株以分泌形式表达重组PGⅡ蛋白,表达量超过50mg/L,发酵培养液经Ni柱亲和层析纯化后,重组PGⅡ蛋白纯度达93.8%。通过免疫比浊试剂盒定量检测,该PGⅡ蛋白的活性定值与实际蛋白质量之间的比值达0.85,配制后的PGⅡ校准品在4℃实时保存1年、37℃加速破坏2周及4℃开盖保存2周后,校准品定值的平均下降幅度都不超过10%,其稳定性能不逊色于商品化的校准品。结论:汉逊酵母重组表达的PGⅡ蛋白可用作体外诊断试剂的校准品。

摘要：目的实现人胃蛋白酶原Ⅰ(pepsiongenⅠ,PGⅠ)在汉逊酵母表达系统中的高效分泌表达,并将纯化的重组PGⅠ蛋白制备成体外诊断试剂用校准品。方法根据汉逊酵母遗传密码子偏爱性优化设计并合成PGⅠ基因,克隆至表达载体p RMHP2.1中,电转化汉逊酵母宿主菌26012,进行多次传代及稳定,筛选高水平分泌表达PGⅠ的菌株,并对该菌株的目的基因整合位置及整合拷贝数进行检测。应用200 L发酵罐大规模制备发酵培养液,通过Ni柱亲和层析方法纯化获得重组PGⅠ蛋白,经胶乳增强免疫比浊试剂盒进行PGⅠ蛋白的定值,应用类血清基质液制备100及50μg/L浓度的PGⅠ校准品后检测稳定性。结果重组表达质粒p RMHP2.1-PGⅠ经双酶切及测序鉴定证明构建正确。筛选获得的重组汉逊酵母菌株分泌表达的PGⅠ蛋白相对分子质量约45 000,表达量达100 mg/L以上,其外源基因整合于宿主r DNA位置,整合拷贝数不低于20个。纯化后的重组PGⅠ蛋白纯度为94.5%,配制后的PGⅠ校准品经4℃实时保存稳定性、37℃加速破坏性及4℃开盖保存稳定性试验,校准品定值的平均下降幅度均不超过10%。结论应用汉逊酵母表达系统可高效分泌PGⅠ蛋白,该蛋白具有良好的稳定性,可用作体外诊断试剂的PGⅠ校准品。