摘要：利用自行设计的三维电极生物膜反应器(3DBER),将三维电极生物膜耦合硫自养反硝化和铁自养反硝化构成3DBER-S/Fe系统,采用模拟的二沉池出水,研究了3DBER-S/Fe系统对阿莫西林的去除效果及阿莫西林对系统脱氮除磷性能的影响。结果表明,3DBER-S/Fe系统中加入1000μg·L^(-1)阿莫西林,NO-3-N的去除率无明显变化,TN、TP去除率略有降低,但仍保持在较高的水平(87.30%、82.39%);3DBER-S/Fe系统可用于降解阿莫西林,添加1000μg·L^(-1)的阿莫西林,出水阿莫西林平均浓度为16.01μg·L^(-1),平均去除率为98.40%;HRT为8 h、6 h和4 h时,3DBER-S/Fe系统对阿莫西林的平均去除率分别为98.40%、98.15%和93.90%;电流从100 mA升高至300 mA时,阿莫西林去除率从98.16%升高至98.62%,电流为500 mA时,去除率降低至97.85%。综合经济性和高效性,HRT=6 h、电流为100 mA为3DBER-S/Fe系统降解阿莫西林抗生素废水的最佳条件。

摘要：背景:目前关于骨髓基质干细胞的标记报道较多,各有其优缺点,寻找一种有效、简便的细胞标记与示踪的方法尤为关键。目的:观察经荧光活性染料DiI标记的大鼠骨髓基质干细胞生长增殖与成骨分化情况。设计、时间及地点:细胞学体外观察,于2008-09/12在南方医科大学组织工程研究中心完成。材料:SD大鼠10只,由南方医科大学实验动物中心提供。DiI应用液为美国Molecular ProbeInc公司产品。方法:全骨髓法体外分离培养大鼠骨髓基质干细胞,取传至第3代细胞,加入无血清的DMEM制成细胞悬液,再加入1×109L-1的DiI应用液5μL,37℃下孵育25min,清洗离心后,加入DMEM高糖完全培养基,荧光显微镜观察细胞荧光强度及形态变化。另取传至第3代细胞,加入含地塞米松、维生素C、β-磷酸甘钠、体积分数为10%胎牛血清的成骨诱导剂进行诱导分化。主要观察指标:DiI标记后细胞形态变化,XTT比色法测定细胞增殖状况,细胞上清液中乳酸脱氢酶活性,成骨诱导后细胞碱性磷酸酶活性及成骨分化能力。结果:锥虫蓝染色见骨髓基质干细胞活力好,仅偶见蓝染细胞,荧光显微镜下DiI标记后全部细胞的胞浆、胞膜均显红色荧光,标记的骨髓基质干细胞呈梭形,胞浆丰富,保持了良好的正常形态,DiI标记阳性率为100%,标记早期细胞形态呈荧光环状,48h后细胞中荧光颗粒增多,荧光增强,细胞核未染荧光。与未标记细胞比较,DiI标记的骨髓基质干细胞增殖吸光度、培养上清液乳酸脱氢酶活性、碱性磷酸酶活性均无明显变化(P>0.05)。成骨诱导7d后,钙钴法染色两组骨髓基质干细胞均见不同程度的胞质呈棕黑色改变。结论:DiI能有效标记体外培养的骨髓基质干细胞,并在细胞内稳定表达,且标记细胞形态良好,对活体细胞无毒性作用;此外,DiI标记不影响骨髓基质干细胞的生长、增殖及成骨分化能力。